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東海大學 食品科學系 盧錫祺、張中和所指導 蔣宇翔的 多酚化合物EA改善高脂誘導C57BL/6小鼠肥胖肌少症 (2021),提出arai v cross 4重量關鍵因素是什麼,來自於肥胖肌少症、YAP TAZ、多酚化合物EA。
而第二篇論文國立陽明交通大學 生物醫學影像暨放射科學系 莊惠燕所指導 李宜蓁的 不同抗發炎藥物於糖尿病動物模式之療效評估 (2021),提出因為有 糖尿病、自體免疫疾病、慢性發炎疾病、類鐸受體、類泛素化、肺炎球菌溶血素、療效評估的重點而找出了 arai v cross 4重量的解答。
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多酚化合物EA改善高脂誘導C57BL/6小鼠肥胖肌少症
為了解決arai v cross 4重量 的問題,作者蔣宇翔 這樣論述:
肥胖型肌少症(sarcopenic obesity)為一肥胖相關疾病,主要與肌肉存在過多內生性脂肪進而引起肌肉組織破壞有關。肥胖導致血管中存在過剩的游離脂肪酸,除了脂肪組織具儲存能力,肌肉亦可透過血液攝取脂肪酸,由於過多脂肪酸進入肌肉,增加肌肉內脂肪(intramuscular lipid, IMCL),造成肌肉內氧化壓力增加引起嚴重的發炎反應,肌肉因此流失衍生成肌少症。EA是一多酚化合物,具有良好抗氧化活性,從先前動物實驗發現, EA具促進YAP及TAZ表現的作用,YAP及TAZ在胚胎發育扮演重要角色,具抑制脂肪分化及促進肌肉分化的雙向作用,基於上述,本研究以肥胖動物模式探討EA對於肥胖肌
少症的改善作用。實驗將C57BL/6雄性小鼠分為正常飲食組及高脂飲食組,誘導38週高脂飼料後給予低中高劑量EA (100mg/kg、150mg/kg及200mg/kg),持續五個月,小鼠組數共八組。結果顯示,各劑量均有效改善腹部脂肪的形成,其中僅高劑量EA具抑制皮下脂肪的作用,低劑量EA則促進皮下脂肪形成,骨骼肌肉重、肌肉內脂肪及脂肪浸潤均有改善的作用,其中高劑量EA的效果最佳,由西方轉漬法分析發現,EA均顯著增加腹部脂肪的YAP及TAZ表現,骨骼肌肉則無相同趨勢,然在正常飲食並給予中及高劑量之小鼠骨骼肌肉發現YAP具有增加的趨勢,而其骨骼肌肉亦有增加的現象;肥胖小鼠之骨骼肌肉則均減少FoxO
3a的表現。綜合上述結果,200mg/kg EA具有減少腹部脂肪、骨骼肌肉脂肪浸潤及肌肉間脂肪的含量並增加肌肉重量的效果,應對肥胖肌少症的策略以減少脂肪生成及促進肌肉的合成為重,EA不僅具有減少脂肪生成的作用,亦具有增加骨骼肌肉的效果,再者,EA為蔬果中常見的成分,因此相較於藥物治療可能引起的副作用,單純且有效的天然物更具應用價值,本研究小鼠最終週齡相當於51歲中年人,說明EA對於青壯年進入中年期間的階段具有潛在良好的作用。未來將以致力於提高EA在人體的吸收率,並進一步確認其在生物體內之作用機制。
不同抗發炎藥物於糖尿病動物模式之療效評估
為了解決arai v cross 4重量 的問題,作者李宜蓁 這樣論述:
誌謝中文摘要 i英文摘要 iii目錄 vi圖目錄 ix表目錄 xii1.緒論 11.1糖尿病簡介 11.1.1糖尿病分型及流行病學 11.1.2糖尿病的臨床症狀及診斷標準 21.1.3糖尿病的風險因子及併發症 21.2糖尿病病程發展與發炎間的關係 21.2.1發炎可能導致糖尿病發生的研究證據 21.2.2發炎機制與第一型糖尿病的關聯性 31.2.3發炎機制與第二型糖尿病的關聯性 41.3類鐸受體相關訊息傳遞與糖尿病進程發展的關聯性 61.3.1類鐸受體及其下游訊息傳遞途徑 61.3.2類鐸受體及其
下游分子在第一型糖尿病中扮演的角色 91.3.3類鐸受體及其下游分子在第二型糖尿病中扮演的角色 91.4類泛素化作用機制與糖尿病進程發展的關聯性 111.4.1類泛素化(NEDDylation)機制介紹 111.4.2類泛素化機制在第一型糖尿病中扮演的角色 131.4.3類泛素化機制在第二型糖尿病中扮演的角色 141.5新型糖尿病藥物開發策略 151.5.1髓系分化因子2 (MD2) 小分子阻斷劑- TLR4INC34 161.5.2髓系分化因子2 (MD2) 短鏈胜肽阻斷劑- C70PLY4 171.5.3類泛素化活化酵素(NAE)抑制劑
-MLN4924 181.6常用於糖尿病研究的動物模式 191.6.1第一型糖尿病小鼠模型 201.6.2第二型糖尿病小鼠模型 232.研究目的 253.材料與方法 263.1實驗材料 263.1.1實驗動物來源 263.1.2動物飼料 263.2尋找藥物溶劑配方 263.3動物實驗設計、分組及執行 273.3.1二十八天C69PLY4藥物腹腔注射毒性及安全性試驗(圖十六) 283.3.1.1動物模式建立及飼養 283.3.1.2實驗動物分組及給藥方式 283.3.1.3毒性及安全性評估指標 293.3.
2利用第一型糖尿病動物模式(HFD/STZ小鼠)進行療效評估(圖十七) 293.3.2.1動物模式建立及飼養 293.3.2.2實驗動物分組及給藥方式 303.3.2.3療效評估指標 313.3.3利用第二型糖尿病動物模式(DB小鼠)進行療效評估(圖十八) 323.3.3.1動物模式建立及飼養 323.3.3.2實驗動物分組及給藥方式 323.3.3.3療效評估指標 323.4樣品採集與評估指標相關實驗方法 333.4.1臨床觀察與體重量測 333.4.2尿液樣品採集 333.4.3血液及血清樣品採集 333.4.4以人用
血糖機量測小鼠血糖值 343.4.5量測尿中肌酸酐及微量白蛋白含量 353.4.6分析血中血球的分類及數量 353.4.7分析血中糖化血色素佔總血紅素的比例 363.4.8量測血清生化指標 373.4.9量測血清中胰島素濃度 393.4.10量測血清中C胜肽濃度 403.4.11分析血清中發炎相關因子濃度 413.5組織病理檢查與免疫組織化學染色及定量 423.5.1組織器官樣品採集及固定 423.5.2組織粗修、石蠟包埋及組織切片 433.5.3蘇木素-伊紅染色法及糖原染色(過碘酸希夫染色) 433.5.4免疫組織化學染
色 443.5.5病理判讀及嚴重度分級 453.5.6量化胰島素表現量及評估????細胞活性 453.6統計分析 464.結果 474.1 可有效溶解C34、C69PLY4及MLN4924之溶劑配方 474.2二十八天C69PLY4藥物腹腔注射毒性及安全性試驗 474.2.1經不同劑量C69PLY4投予後的動物臨床觀察與體重量測 474.2.2動物經不同劑量C69PLY4投予後的血液病理分析 484.2.3動物經不同劑量C69PLY4投予後的血清生化分析 484.2.4動物經不同劑量C69PLY4投予後的組織病理觀察 484.3
C34、C69PLY4、MLN4924於第一型糖尿病動物模式(HFD/STZ小鼠)之療效評估 504.3.1第一型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的臨床觀察與體重量測 504.3.2第一型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血糖、糖化血色素及胰島素變化 514.3.3第一型糖尿病動物經C34及C69PLY4治療後,胰臟組織中????細胞的活性變化 524.3.4第一型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血清及尿液生化分析 534.3.5第一型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療
後的組織病理觀察 544.3.6第一型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血中發炎相關因子分析 564.4 C34、C69PLY4、MLN4924於第二型糖尿病動物模式(DB小鼠)之療效評估 574.4.1第二型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的臨床觀察與體重量測 574.4.2第二型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血糖、糖化血色素及胰島素變化 574.4.3第二型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血清及尿液生化分析 594.4.4第二型糖尿病動物經C34、C69
PLY4及MLN4924治療後的組織病理觀察 604.4.5第二型糖尿病動物經C34、C69PLY4及MLN4924治療後的血中發炎相關因子分析 615.討論 636.結論 727.參考文獻 738.圖 1029.表 16910.附錄 19710.1附錄一、小鼠血液病理正常參考範圍 19710.2附錄二、小鼠血液白血球種類及佔比正常參考範圍 19810.3附錄三、小鼠血液生化正常參考範圍 199
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