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圖解新款汽車熔斷器與繼電器速查大全（2013-2017）（第3版）

為了解決W205的問題，作者蔡永紅（主編） 這樣論述：

書根據汽車製造廠家資料對汽車熔斷器和繼電器的資料做了收集與整理，詳細介紹了主流車型熔斷器與繼電器的安裝位置、規格和功能，部分車型還給出了電控單元的位置分佈圖。書中按照大眾/奧迪、上汽通用、北京現代、豐田、本田、東風日產、賓士、寶馬、長安福特、東風雪鐵龍、東風悅達起亞、長安、長城、吉利、奇瑞、比亞迪等分章節編寫，資料準確，易查易找。本書可供汽車維修專業人員使用，也可供汽車維修專業師生閱讀參考。 第一章 大眾/奧迪車系第一節 一汽-大眾車系一、全新寶來（2016年起）二、全新捷達（2013～2017年款）三、新速騰（2015～2017年款）四、全新邁騰B8L（2016年起）五、高

爾夫A7（2014～2017年款）/嘉旅（2016年起）第二節 上海大眾車系一、新朗逸（2015～2017年款）二、全新桑塔納（2013～2016年款）/桑塔納浩納（2015～2017年款）三、全新途觀（2013～2017年款）四、新波羅（2015～2017年款）五、凌度（2015～2017年款）六、全新帕薩特（2016年起）七、斯柯達全新明銳（2014～2016年款）第三節 一汽奧迪一、奧迪A6L（2015～2017年款）二、奧迪A4L（2012～2017年款）三、奧迪A3（2014～2017年款）四、奧迪Q5（2013～2017年款）五、奧迪Q3（2013～2016年款）第二章 上汽通用車

系第一節 別克車系一、全新英朗（2016～2017年款）二、昂科威（2015～2017年款）三、威朗（2015～2017年款）四、新凱越（2014～2016年款）五、全新君越（2017年起）六、全新君威（2013～2016年款）七、GL8（2016年起）八、昂科拉（2015～2017年款）第二節 雪佛蘭車系一、新賽歐（三廂）（2015～2016年款）二、新科魯茲（2016年起）三、全新邁銳寶（2016年款）第三節 五菱車系一、五菱宏光（2014～2017年款）二、五菱之光（2013～2017年款）三、五菱榮光/S（2013～2017年款）四、寶駿560（2015-2017年款）五、寶駿730（

2014～2017年款）第三章 北京現代車系第一節 新朗動（2014～2017年款）第二節 新悅動（2016年起）第三節 全新途勝（2015～2017年款）第四節 名圖（207年起）第五節 領動（2016年起）第四章 豐田車系第一節 卡羅拉（2013～2015年款）第二節 RAV4（2014～2016年款）第三節 威馳（2014～2016年款）第四節 凱美瑞（2015年款）第五節 漢蘭達（2013～2015年款）第六節 雷凌（2015～2017年款）第五章 本田車系第一節 CR-V（2016年起）第二節 XR-V（2015～2017年款）第三節 思域（2016年起）第四節 繽智（2015～20

17年款）第五節 雅閣（（2017年起））第六節 飛度（2014～2015年款）第七節 凌派（2014～2015年款）第六章 東風日產車系第一節 全新軒逸（2016～2017年款）第二節 新奇駿（2014～2017年款）第三節 全新逍客（2016～2017年款）第四節 新天籟（2016年起）第五節 新琪達（2016年起）第七章 奔馳車系第一節 奔馳C級W205/GLC級W235（2017年款）第二節 奔馳E級W213（2016年起）第八章 長安福特車系第一節 福睿斯（2015～2017年款）第二節 銳界（2015～2017年款）第三節 翼虎（2013～2017年款）第四節 全新福克斯（2015

年款）第五節 新蒙迪歐（2013～2016年款）第九章 東風雪鐵龍車系第一節 全新愛麗舍（2014～2017年款）第二節 C3-XR（2015～2017年款）第十章 東風悅達起亞車系第一節 新一代K2（2017年起）第二節 新K3（2016年起）第三節 新智跑（2014～2017年款）第十一章 長城車系第一節 哈弗H6（2016年起）第二節 哈弗H2（2014～2017年款）第十二章 吉利車系第一節 帝豪（2013～2017年款）第二節 新遠景（2015～2017年款）第三節 博越（2016年起）第十三章 長安車系第一節 長安CS75（2014～2017年款）第二節 長安CS35（2012～2

015年款）第三節 逸動（2013～2017年款）第四節 悅翔V7（2015～2016年款）第十四章 其他車系第一節 奇瑞一、艾瑞澤5（2016年起）二、瑞虎3（2014～2016年款）第二節 比亞迪一、 比亞迪F3（2016年起）二、 比亞迪宋（2016年起）第三節 長安馬自達3昂克賽拉（2014～2017年款）第四節 東風標致408（2015～2017年款）第五節 北汽幻速 H3（2015～2017年款）第六節 榮威RX5（2016年起）

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利用多重轉基因斑馬魚探討基因與飲食因素協同促進肝癌生成之研究

為了解決W205的問題，作者鄧婷瑄 這樣論述：

Content謝辭 I中文摘要 IIAbstract IVAbbreviation list (according to order of alphabet) VIIContent IXChapter 1. Introduction 11.1 Risk factors for liver cancer and hepatocellular carcinoma 11.2 Dietary fat intake, alcohol and fructose contribute to liver cancers 21.3 Non-alcoholic fatty liver disea

se and non-alcoholic steatohepatitis 31.4 Zebrafish as human disease models 41.5 Genetic factors contribute to liver cancers 51.6 Multiple transgenic zebrafish in NAFLD and HCC 71.7 Next-generation sequencing analysis 7Chapter 2. Materials and Methods 92.1 Zebrafish husbandry and maintenance

92.2 Zebrafish larva feeding and treatment 92.3 High fat diet treatment group 92.4 Ethanol treatment group 102.5 Fructose treatment group 102.6 Zebrafish larvae and adult sample collection and screening 102.7 Whole-mount Oil Red O Staining and quantification analysis 112.8 RNA extraction 122.

9 Complementary DNA synthesis 132.10 Quantitative reverse-transcription PCR 132.11 Hematoxylin & Eosin (H&E) staining 142.12 Statistical Analysis 142.13 Next Generation Sequencing 14Chapter 3. Results 163.1 Using multiple-gene transgenic zebrafish larva to establish a fatty liver and liver can

cer model by diet 163.2 High-fat diet induced lipid accumulation in many transgenic zebrafish larva 163.3 Alcohol treatment only significantly increase lipid accumulation in EDN1 transgenic zebrafish larvae 173.4 4% fructose treatment has significant increase the lipid accumulation in [HBx,src,p5

3-/-,RPIA] transgenic zebrafish larva 183.5 Transgenic zebrafish larva fed with high fat diet for 15 days increase the expression of cell cycle/proliferation, lipid metabolism and inflammation-related genes 183.6 Transgenic zebrafish larva fed with high fat diet for 30 days increase the expression

of cell cycle/proliferation and inflammation-related genes 203.7 Using multiple-gene transgenic adult zebrafish reveals the synergistic effect of genes in the development of liver cancer 203.8 Multiple transgenic adult fish of 1M, 3M, 5M and 7M express synergistic effects in cell cycle/proliferat

ion genes by qRT-PCR 213.9 Multiple transgenic adult fish of 1M, 3M, 5M and 7M exhibits histopathological changes by H&E stain 223.10 Using adult fish for transcriptomic and pathway analysis by NGS 233.11 NGS (RNA-seq) analysis of the expression of the whole genome 233.12 Transcriptomic analysis

reveals in [HBx,src,p53-/-,RPIA]: the transcription factor and steroid hormone receptor activity are upregulated in 5 months, and damage DNA binding is downregulated at 5 months 233.13 Transcriptomic analysis reveals in [HBx,src,p53-/-,MAN1A1]: the transcription factor complex are upregulated in 5

months 253.14 Pathway analysis for 5 month upregulated genes of [HBx,p53-/-], [HBx,src], [HBx,src,p53-/-,RPIA] and [HBx,src,p53-/-,MAN1A1] transgenic fish 263.15 Functional classification of all up-regulated or down-regulated genes in different fish at different stages to find commonalities 27Ch

apter 4. Discussion 30Figures 35Figure 1. Dietary factors and genetic factors promoting liver diseases and cancer formation 35Figure 2. Zebrafish larvae high-fat diet feeding flowchart 37Figure 3. Effect of HFD treatment towards Oil Red O Staining of lipid accumulation in zebrafish larvae 39Fig

ure 4. Representative images of Oil Red O staining results of HFD treatment 41Figure 5. The schedule for zebrafish larvae treated with ethanol 43Figure 6. Effect of ethanol treatment towards Oil Red O Staining of lipid accumulation in zebrafish larvae 45Figure 7. Zebrafish larvae 4% fructose or 4

% glucose (calorie control) feeding flowchart 47Figure 8. Effect of fructose treatment towards Oil Red O Staining of lipid accumulation in zebrafish larvae 49Figure 9. Effect of high fat diet treatment towards the expression of lipid metabolism and inflammation related genes in zebrafish larvae.

51Figure 10. Effect of high fat diet treatment 30 days increased the expression of inflammation and proliferation related genes 55Figure 11. Flowchart of analysis the hepatocarcinogenesis for multiple transgenic fish 59Figure 12. Expression of cell proliferation markers from different transgenic a

dult fish at 1, 3, 5, and 7 months of age. 61Figure 13. Expression of cell proliferation markers from p53-/-, [HBx,src], [HBx,p53-/-], [HBx,src,RPIA], [HBx,src,p53-/-,RPIA], and [HBx,src,p53-/-,MAN1A1] showed peak in 3 or 5 months of age 64Figure 14. H&E stain of various transgenic fish at 1, 3, 5

, 7M 66Figure 15. Transcriptomic analysis for [HBx,src,p53-/-,RPIA] transgenic fish at 3, 5, 7 months of age. 70Figure 16. Transcriptomic analysis for [HBx,src,p53-/-,MAN1A1] transgenic fish at 3, 5, 7 months of age. 78Figure 17. Pathway analysis for 5 month upregulated genes of [HBx,p53-/-], [HB

x,src], [HBx,src,p53-/-,RPIA] and [HBx,src,p53-/-,MAN1A1] transgenic fish 84Figure 18. Classification of all up-regulated or down-regulated genes in different fish at different stages in order to find commonalities among them. 99Figure 19. Transcription factors are down-regulated in 3 months, upre

gulated at 5 months and downregulated at 7 months of age. 100Tables 106Table 1. The primer list for qRT-PCR in transgenic zebrafish 106Table 2. 1M samples for qRT-PCR 107Table 3. 3M RNA samples for qRT-PCR 108Table 4. 5M RNA samples for qRT-PCR 109Table 5. 7M RNA samples for qRT-PCR 110Table

6. Selected 3M RNA samples for RNA-seq 111Table 7. Selected 5M RNA samples for RNA-seq 112Table 8. Selected 7M RNA samples for RNA-seq 113References 114