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國立高雄科技大學 企業管理系 劉季貞所指導 饒幃丞的 賦權領導與工作敬業度關聯性研究-以工作自主性為中介效果 （2021），提出GS250 自售關鍵因素是什麼，來自於賦權領導、工作敬業度、工作自主性。

而第二篇論文大葉大學 食品暨應用生物科技學系 吳建一所指導 廖峻達的 探討Xylaria nigripes之固態發酵萃取物及其抗氧化活性之研究 （2021），提出因為有 黑柄炭角菌、液態發酵、固態發酵、抗氧化活性的重點而找出了 GS250 自售的解答。

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新在哪裡？
●總代理和泰汽車 8/27 推出 2021 年式 ES，ES 250 僅提供 F Sport、ES 200 換上全新動力
●導入 LSS 2.0 包含 PCS 前方預警防護系統、DRCC 全速域跟車系統、LTA 車道追蹤輔助系統、AHS 自動遠光燈輔助
●ES 250 F Sport 外觀配備網格型水箱護罩搭配燻黑鍍鉻飾條、18 吋燻黑鋁圈、擾流尾翼與葉子板上的 F SPORT 銘牌。
●ES 250 F Sport 在內裝方面配備跑車化座椅、F SPORT 方向盤、排檔桿及鋁合金踏板
●ES 250 F Sport 在底盤方面針對懸吊系統進行運動化調校，調整懸吊阻尼設定並搭配車身抑震拉桿
●ES 200 換上全新 M20A-FKS 2.0 升汽油引擎，最大馬力提升至 173ps，搭配可模擬 10 速的 Direct Shift-CVT 變速箱，平均油耗由 13.3km/L 提升至 15.7km/L，對應六期環保法規

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第七代 Lexus ES 車系在 2018 年北京車展發表時，不僅換上 TNGA 模組化平台架構，更首度推出運動化 F Sport 車型，搭配品牌新世代的設計語言，顛覆過往溫和的家庭豪華房車形象，然而同年和泰汽車導入販售之時，初期並無 F Sport 車型，經過約莫 2 年的發展，總算在今年 8/27 推出 2021 年式新車時，以 ES 250 動力推出單一等級 F Sport 車型，並將 ES 200 的動力系統更新。

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賦權領導與工作敬業度關聯性研究-以工作自主性為中介效果

為了解決GS250 自售的問題，作者饒幃丞 這樣論述：

本研究旨在探討汽車公司第一線服務人員針對賦權領導對工作敬業度之影響，並加入工作自主性探究中介作用效果。抽樣對象以汽車公司台南、高雄、屏東地區營業據點，以基層工作的第一線服務人員為調查樣本。採用問卷調查法並以立意抽樣方法發放問卷，總計發放200份，有效問卷200份，回收率為100%。問卷回收後使用SPSS 24版軟體進行敘述性統計分析、信度分析、皮爾森相關分析、獨立樣本t檢定、單因子變異數分析，迴歸分析及中介分析來驗證變項間之關係。 實證結果發現：（1）賦權領導對工作敬業度具有部分正向顯著影響；（2）賦權領導對工作自主性具有部分正向顯著影響；（3）工作自主性對工作敬業度具有正向顯著影響；（4）

工作自主性在賦權領導與工作敬業度之間具有部分中介效果。

探討Xylaria nigripes之固態發酵萃取物及其抗氧化活性之研究

為了解決GS250 自售的問題，作者廖峻達 這樣論述：

封面內頁簽名頁中文摘要 iiiABSTRACT iv誌謝 v目錄 vi圖目錄 xiii表目錄 xviii1. 前言 12. 文獻回顧 32.1. 藥用真菌介紹 32.2. 生物活性及其成分 42.2.1. 蟲草素(cordycepin) 42.2.2. 腺苷(Adenosine) 72.2.3. 麥角甾醇(Ergosterol) 92.2.4. γ-胺基丁酸(γ-Aminobutyric acid, GABA) 112.2.5. 多醣(Polysaccharides) 132.2.6. 多酚(Polyphenols) 142.2.7. 類黃酮(Flavonoid) 162.3. 生物活性之

相關研究 172.3.1. 抗氧化活性(Antioxidant activity) 172.3.2. 發炎活性(Anti-inflammatory activity) 212.4. Xylaria sp.之簡介及相關研究 232.5. 真菌人工培養之方法 252.5.1. 液態發酵(Submerged fermentation，簡稱SMF) 252.5.2. 固態發酵(Solid state fermentation，簡稱SSF) 262.5.3. SSF和SMF之間的區別 302.6. 真菌萃取活性成分之研究 332.6.1. 超音波輔助萃取(Ultrasound-assisted extr

action，簡稱UAE) 332.6.2. 微波輔助萃取(Microwave-assisted extraction，簡稱MAE) 342.6.3. 超臨界流體萃取(Supercritical fluid extraction，簡稱SEF) 352.6.4. 不同萃取技術的優缺點 373. 材料方法 403.1. 實驗材料 403.1.1. 實驗藥品 403.1.2. 儀器設備 423.2. 實驗方法 433.2.1. 黑柄炭角菌菌種篩選及鑑定 433.2.2. 黑柄炭角菌菌絲體液態發酵 443.2.2.1. 不同碳源種類對黑柄炭角菌菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 453.2.2.2

. 不同碳源濃度對黑柄炭角菌菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 453.2.2.3. 不同氮源種類對黑柄炭角菌菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 453.2.2.4. 不同氮源濃度對黑柄炭角菌菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 463.2.2.5.不同溫度對黑柄炭角菌菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 463.2.3. 黑柄炭角菌固態發酵 473.2.3.1. 不同穀物對黑柄炭角菌子實體生長之影響 483.2.3.2. 不同光強度對黑柄炭角菌子實體生長之影響 483.2.3.3. 不同光波長對黑柄炭角菌子實體生長及成分含量之影響 493.2.3.4. 不同穀物在直接光照及暗室培

養七天對黑柄炭角菌子實體生長之影響 513.2.3.5. 不同濃度RB前培養之菌絲接入不同固態培養基對黑柄炭角菌子實體生長之影響 513.2.4. 不同萃取溶劑及萃取方法 513.3. 分析方法 523.3.1. 生物質量乾重分析 523.3.2. 胞外多醣乾重分析 523.3.3. 蟲草素及腺苷含量分析 533.3.3.1. 標準曲線 533.3.3.2. HPLC操作條件 533.3.4. 尿苷、尿嘧啶、腺嘌呤含量分析 553.3.4.1. 標準曲線 553.3.4.2. HPLC操作條件 553.3.5. 麥角甾醇含量分析 583.3.5.1. 標準曲線 583.3.5.2. HPLC操

作條件 583.3.6. γ-Aminobutyric acid (GABA)含量分析 593.3.6.1. 標準曲線 593.3.6.2. HPLC操作條件 603.3.7. 多醣含量測定 613.3.8. 蛋白質含量測定 623.3.9. 總酚含量 633.3.10. 總類黃酮含量 643.3.11. ABTS自由基清除試驗 663.3.12. DPPH自由基清除試驗 663.3.13. 還原力能力測定 673.3.14. 亞鐵螯合能力測定 673.3.15. 鐵離子還原能力測定 683.3.16. SOD-like活性分析(鄰苯三酚自氧化法) 693.4. 抗菌試驗 703.4.1.

Escherichia coli菌種活化 703.4.2. Staphylococcus aureus菌種活化 703.4.3. Propionibacterium acnes菌種活化 713.4.4. 抗菌能力試驗 714. 結果討論 724.1. Xylaria adscendens WU之菌種鑑定 724.2. 探討X. adscendens WU菌絲體液態發酵 744.2.1. 不同碳源種類對X. adscendens WU菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 744.2.2. 不同碳源濃度對X. adscendens WU菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 784.2.3.

不同氮源種類對X. adscendens WU菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 824.2.4. 不同氮源濃度對X. adscendens WU菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 904.2.5. 不同溫度對X. adscendens WU菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 964.3. 探討X. adscendens WU固態發酵 994.3.1. 不同穀物對X. adscendens WU子實體生長之影響 994.3.2. 不同光強度對X. adscendens WU子實體生長之影響 1044.3.3. 不同光波長對X. adscendens WU子實體生長 之影響 1094

.3.4. 不同穀物在直接光照及暗室培養七天對X. adscendens WU子實體生長之影響 1134.3.5. 不同濃度RB前培養之菌絲接入不同固態培養基對X. adscendens WU子實體生長之影響 1174.4. 不同萃取溶劑及萃取方法成分含量之影響 1224.4.1. 探討X. adscendens WU最佳固態發酵子實體及基底物萃取物成分含量之影響 1224.4.2. 探討X. adscendens WU在不同光波長下基底物萃取物成分含量之影響 1254.5. X. adscendens WU不同部位萃取物之抗氧化活性 1294.5.1. X. adscendens WU菌絲體

萃取物之抗氧化活性 1294.5.1.1. X. adscendens WU菌絲體萃取物之ABTS自由基清除試驗 1294.5.1.2. X. adscendens WU菌絲體萃取物之 DPPH自由基清除試驗 1344.5.1.3. X. adscendens WU菌絲體萃取物之還原力能力 1374.5.1.4. X. adscendens WU菌絲體萃取物之亞鐵離子螯合能力 1404.5.1.5. X. adscendens WU菌絲體萃取物之鐵離子還原能力 1444.5.1.6. X. adscendens WU菌絲體萃取物之SOD like活性 1474.5.2. X. adscende

ns WU基底物之抗氧化活性 1504.5.2.1. X. adscendens WU基底物萃取物之ABTS自由基清除試驗 1504.5.2.2. X. adscendens WU基底物萃取物之DPPH自由基清除試驗 1544.5.2.3. X. adscendens WU基底物萃取物之還原力能力 1574.5.2.4. X. adscendens WU基底物萃取物之亞鐵離子螯合能力 1604.5.2.5. X. adscendens WU基底物萃取物之鐵離子還原能力 1634.5.2.6. X. adscendens WU基底物萃取物之SOD like活性 1664.6. X. adscen

dens WU不同部位萃取物之抗菌試驗 1694.6.1. X. adscendens WU菌絲體萃取物對E. coli、S. aureus及P. acnes的抗菌效果 1694.6.2. X. adscendens WU基底物萃取物對E. coli、S. aureus及P. acnes的抗菌效果 1725. 結論 175參考文獻 177圖目錄Fig. 1-1 實驗架構 2Fig. 2-1. 蟲草素的分子結構 6Fig. 2-2. 腺苷的分子結構 9Fig. 2-3. 麥角甾醇的分子結構 10Fig. 2-4. GABA的分子結構 12Fig. 2-5. Xylaria sp. 25Fig.

2-6. 影響SSF之因素 28Fig. 2-7. 實驗室規模的SEF萃取設備 37Fig. 3-1. 液態發酵結構介紹 44Fig. 3-2. 黑柄炭角菌絲體液態發酵流程 44Fig. 3-3. 固態發酵結構介紹 47Fig. 3-4. 黑柄炭角菌穀物固態發酵流程 48Fig. 3-5. 探討不同光波長試驗示意圖 50Fig. 3-6. 蟲草素檢量線 54Fig. 3-7. 腺苷檢量線 54Fig. 3-8. 尿苷檢量線 56Fig. 3-9. 尿嘧啶檢量線 57Fig. 3-10. 腺嘌呤檢量線 57Fig. 3-11. 麥角固醇檢量線 59Fig. 3-12. GABA檢量線 60Fi

g. 3-13. 多醣濃度的檢量線 61Fig. 3-14. 蛋白質濃度的檢量線 63Fig. 3-15. 總酚濃度的檢量線 64Fig. 3-16. 類黃酮的檢量線 65Fig. 3-17. FeSO4．7H2O的檢量線 69Fig. 4-1. Xylaria adscendens WU之親緣樹圖 73Fig. 4-2. X. adscendens WU在不同碳源種類下培養7天之pH值、胞外多醣及Biomass 77Fig. 4-3. X. adscendens WU以葡萄糖、蔗糖及糖蜜在不同濃度下培養4天之pH值、胞外多醣及Biomass 81Fig. 4-4. X. adscendens

WU在不同氮源種類下以葡萄糖作為碳源培養8天後之pH值、胞外多醣及Biomass 87Fig. 4-5. X. adscendens WU在不同碳源種類下以蔗糖作為碳源培養8天後之pH值、胞外多醣及Biomass 88Fig. 4-6. X. adscendens WU在不同碳源種類下以糖蜜作為碳源培養8天後之pH值、胞外多醣及Biomass 89Fig. 4-7. 探討碳源為葡萄糖時氮源為酵母萃取物在不同濃度下培養X. adscendens WU菌絲體8天後之pH值、胞外多醣及Biomass 94Fig. 4-8. 探討碳源為糖蜜時氮源為酵母萃取物在不同濃度下培養X. adscendens

WU菌絲體8天後之pH值、胞外多醣及Biomass 95Fig. 4-9. 探討在不同溫度下培養X. adscendens WU菌絲體7天後之pH值、胞外多醣及Biomass 98Fig. 4-10. 不同穀物對X. adscendens WU固態發酵基底物含水率產率之影響 102Fig. 4-11. 不同穀物對X. adscendens WU固態發酵子實體產量及穀物消耗重之影響 103Fig. 4-12. 不同光強度對X. adscendens WU固態發酵基底物含水率產率之影響 107Fig. 4-13. 不同光強度對X. adscendens WU固態發酵子實體產量及穀物消耗重之影響

108Fig. 4-14. 不同光波長對X. adscendens WU固態發酵基底物含水率產率之影響 111Fig. 4-15. 不同光波長對X. adscendens WU固態發酵子實體產量及穀物消耗重之影響 112Fig. 4-16. 不同穀物在直接光照及暗室培養七天對X. adscendens WU固態發酵基底物含水率產率之影響 115Fig. 4-17. 不同穀物在直接光照及暗室培養七天對X. adscendens WU固態發酵子實體產量及穀物消耗重之影響 116Fig. 4-18. 不同濃度RB前培養之菌絲接入不同固態培養基對X. adscendens WU (QN)固態發酵基底物

含水率產率之影響 120Fig. 4-19. 不同濃度RB前培養之菌絲接入不同固態培養基對X. adscendens WU (QN)固態發酵子實體產量及穀物消耗重之影響 121Fig. 4-20. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的清除ABTS自由基能力 131Fig. 4-21. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的清除ABTS自由基能力 132Fig. 4-22. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的DPPH自由基清除能力 135Fig. 4-23. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的DPPH自由基清除能力 136

Fig. 4 24. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的還原能力 138Fig. 4 25. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的還原能力 139Fig. 4-26. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的亞鐵離子螯合能力 142Fig. 4-27. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的亞鐵離子螯合能力 143Fig. 4-28. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的鐵離子還原能力 145Fig. 4-29. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的鐵離子還原能力 146Fig. 4-30.

不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的超氧陰離子自由基清除能力 148Fig. 4-31. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的超氧陰離子自由基清除能力 149Fig. 4-32. 不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的清除ABTS自由基能力 151Fig. 4-33. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的清除ABTS自由基能力 152Fig. 4-34. 不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的DPPH自由基清除能力 155Fig. 4-35. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的DPPH自由基清除

能力 156Fig. 4-36. 不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的還原能力 158Fig. 4-37. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的還原能力 159Fig. 4-38. 不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的亞鐵離子螯合能力 161Fig. 4-39. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的亞鐵離子螯合能力 162Fig. 4-40. 不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的鐵離子還原能力 164Fig. 4-41. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的鐵離子還原能力 165Fig. 4-42.

不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的超氧陰離子自由基清除能力 167Fig. 4-43. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的超氧陰離子自由基清除能力 168表目錄Table 2-1. 固態發酵的定義 29Table 2-2. SSF的優、缺點 30Table 2-3. SSF和SMF的詳細比較 32Table 2-4. 不同萃取技術的優、缺點 39Table 3-1. 不同光波長Irradiance (%)輻照度 49Table 3-2. 黑柄炭角菌萃取物條件代號表 52Table 4-1. 探討不同碳源種類培養X. adscendens WU菌絲體7天之生

長狀況 76Table 4-2. 探討葡萄糖、蔗糖及糖蜜在不同濃度下培養X. adscendens WU菌絲體4天之生長狀況 80Table 4-3. 探討不同氮源種類以葡萄糖作為碳源培養X. adscendens WU菌絲體8天之生長狀況 84Table 4-4. 探討不同氮源種類以蔗糖作為碳源培養X. adscendens WU菌絲體8天之生長狀況 85Table 4-5. 探討不同氮源種類以糖蜜作為碳源培養X. adscendens WU菌絲體8天之生長狀況 86Table 4-6. 探討碳源為葡萄糖時氮源為酵母萃取物在不同濃度下培養X. adscendens WU菌絲體8天 之生長狀況

92Table 4-7. 探討碳源為糖蜜時氮源為酵母萃取物在不同濃度下培養X. adscendens WU菌絲體8天之生長狀況 93Table 4-8. 探討在不同溫度下培養X. adscendens WU菌絲體7天之生長狀況 97Table 4-9. 不同榖物對X. adscendens WU固態培養子實體28天之生長狀況 101Table 4-10. 不同光強度對X. adscendens WU固態培養子實體28天之生長狀況 106Table 4-11. 不同光波長對X. adscendens WU固態培養子實體28天之生長狀況 110Table 4-12. 不同穀物在直接光照及暗室培養

七天對X. adscendens WU固態培養子實體28天之生長狀況 114Table 4-13. 不同濃度RB前培養之菌絲接入不同固態培養基對X. adscendens WU (QN)固態培養子實體28天之生長狀況 118Table 4-14. X. adscendens WU在不同萃取溶劑及萃取方法之成分含量分析 124Table 4-15. QN在不同溶劑及萃取方法之成分含量分析 127Table 4-16. X. adscendens WU在不同光波長下以不同溶劑及萃取方法對基底物之成分含量分析 128Table 4-17. X. adscendens WU菌絲體抗氧化活性分析 133

Table 4-18. X. adscendens WU基底抗氧化活性分析 153Table 4-19. X. adscendens WU菌絲體對E. coli、S. aureus及P. acnes的抗菌效果 170Table 4-20. X. adscendens WU菌絲體對E. coli、S. aureus及P. acnes的抗菌抑菌圈大小 171Table 4-21. X. adscendens WU基底對E. coli、S. aureus及P. acnes的抗菌效果 173Table 4-22. X. adscendens WU基底對E. coli、S. aureus及P. acne

s的抗菌抑菌圈大小 174

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